【干货文章】流式与磁珠分选你选哪个
两者比较在价格方面，流式分选可能更具成本优势，而磁珠法在某些场景下更易于操作。选择哪种方法，需根据实验需求、细胞类型和纯度要求来决定。U平台服务U平台提供专业的实验室服务，拥有GMP级设施和经验丰富的技术团队，致力于为科研人员提供真实实验的解决方案。如需获取更多信息，可通过联系方式咨询。
在实际应用中，选择流式细胞分选还是免疫磁珠分选，取决于实验的具体需求。流式分选适用于多标记识别、多路分选以及需要高度纯度或复杂表型筛选的情况；而磁珠分选则适合操作便捷、对细胞活性影响小的场景。
总体而言，磁珠分选和流式分选的选择应根据具体的分选目的和样本特点来决定。磁珠分选的操作简单、快速高效且成本较低，适合样本处理受限和纯化程度要求不高的情况；而流式分选具有高度特异性、高纯度以及多参数分析的优势，适用于需要高度特异性分选和多参数分析的样本。
流式分选与磁珠分选各有优势，不能互相取代。流式分选适合多参数分选，但对设备要求较高；磁珠分选操作简单、速度快、对设备和技术员要求较低，但分选方式单一。根据实验要求选择合适的分选方法。需注意的是，细胞分选方法选择应考虑纯度、细胞表面特征、分选要求等因素。
总体而言，磁珠分选和流式分选各有利弊。选择合适的技术取决于分选的具体目标和样本特性。磁珠分选操作简单，高效，仪器成本低，维护成本低，但受特异抗原或配体的可用性限制。FACS技术则具有高度特异性，高纯度和多参数分析能力，但设备昂贵，操作复杂，可能影响细胞活力。
磁珠一次只能基于一种抗原来分选，而流式的分选抗原数目是由你机器所能检测的上限来决定的。高档仪器可以同时基于20种左右的抗原指标来进行分选。所以流式分选的结果是大大优于磁珠的。磁珠一般只用于初步的富集，而不是分选。
手把手教会你解读流式细胞数据
1、在数据管理方面，流式细胞仪生成的FCS（流式细胞术标准）文件格式是统一的文件格式，包含关键词和标准信息。最佳做法是使用MIFIowCyt数据注释标准，确保实验变量的详细信息与数据文件相关联。数据的分辨率和呈现通过组距和数据转换来实现，确保精度和动态范围的正确显示。
2、细胞凋亡检测原理 细胞凋亡时，DNA内切酶激活，导致染色体DNA断裂，形成粘性3-OH末端。这些末端在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）作用下，被标记上荧光素、过氧化物酶、碱性磷酸酶或生物素衍生物。通过荧光显微镜或流式细胞仪，即可检测凋亡细胞，该方法称为TUNEL法。TUNEL法是检测细胞凋亡的常用手段。
3、装备清单包括：一体化的gRNA-Cas9载体分子克隆实验平台细胞间+流式分选仪能浏览网站的电脑能看得懂一些英语的稳定廉价劳动力（研究生）采购ssDNA的钱（或者是制作ssDNA的精力）基因敲入分为两种方式，一是使用慢病毒、piggyBac等工具进行随机整合，二是进行特定位点的基因敲入。
流式细胞仪检测项目
流式细胞仪检测项目：流式细胞仪可以检测细胞结构，包括：细胞大小、细胞粒度、细胞表面面积、核浆比例、DNA含量与细胞周期、RNA含量、蛋白质含量。流式细胞仪可以检测细胞功能，包括：细胞表面/胞浆/核的特异性抗原、细胞活性、细胞内细胞因子、酶活性、激素结合位点和细胞受体。
流式细胞仪检测项目主要包括细胞表面标记分析、细胞内标记分析、细胞功能分析、细胞凋亡分析等。流式细胞仪是一种在液流中快速检测细胞特性的技术。它将单个细胞与特异性抗体结合，通过激光激发荧光，测量每个细胞的多个参数，从而实现对细胞的快速、多参数分析。
流式细胞仪FACSVerse能够检测单克隆抗体。这款仪器运用了定量荧光细胞化学方法、单克隆抗体和免疫荧光染色的原理和技术，能够在快速流动的液体中对单细胞的多种参数进行定性和定量分析，同时还能实现细胞的分选和纯化。
贝克曼流式细胞仪是一种检测细胞表面分子和细胞内部结构的仪器，主要用于淋巴细胞亚群分析及绝对计数、HLA-B27的检测（强制性脊柱炎）以及血液病/淋巴瘤的免疫分型。除了中心实验室及检验科以外，应用的临床科室主要集中在血液科、肿瘤科等。此外，疾控系统也应用于HIV监测 。
流式细胞仪检测DNA含量的过程主要包括以下几个步骤：首先，使用特定的DNA荧光染料对细胞进行染色，这样可以使其在荧光显微镜下产生可测量的荧光信号。接下来，将染色后的细胞样品与已知DNA含量的标准品（比如鸡红细胞）进行比较，以确定待测样品的DNA含量。
流式细胞仪的技术指标包括分析速度、荧光检测灵敏度、前向角散射（FSC）检测灵敏度、分辨率和分选速度。一般分析速度在每秒1000～5000个细胞，大型机可达每秒上万个细胞。荧光检测灵敏度能测出单个细胞上600个荧光分子，两个细胞间荧光差超过5%即可区分。